Supplementation of feline hemoplasmosis treatment protocol with gamavit and phosprenyl increases the effectiveness of anemia correction: a retrospective analysis. Summarizationofcases.

Савойская С. Л.^1,2, к.в.н., старший  научный сотрудник, Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.

¹ Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России.

² Ветеринарная клиника «Хатико», Москва.

В настоящее исследование включены клинические данные, собранные с 2016 по 2023 год. Всего гемоплазмоз был выявлен у 102 особей (63 кошки и 39 котов) в возрасте от 5-7 месяцев до 8 лет. Из них было 34 пациента с тяжелой формой заболевания, и 68 – с легкой. У кошек с тяжелой формой гемоплазмоза в 45% случаев болезнь осложнялась хронической почечной недостаточностью. Также 5% из них были хроническими носителями токсоплазм. Большинство животных было из приютов, или бездомные.

Одним из ведущих клинических признаков гемоплазмоза служит анемия, развивающаяся в результате массового гемолиза пораженных эритроцитов.

Цель настоящей работы состояла в том, чтобы устранить анемию и ускорить нормализацию кроветворения у кошек с гемоплазмозом.При лечении 45 животных (контрольная группа) использовали стандартную схему терапии, включавшую антибиотики и глюкокортикоиды, тогда как в схему лечения 57 особей (опытная группа) добавляли гамавит и фоспренил.  При использовании такой терапевтической схемы отмечали раннее купирование анемии, стимуляцию эритропоэза, восстановление формулы крови и нормализацию печеночной функции, а выздоровление больных животных наступало быстрее на 4-5 дней.

Ключевые слова: гемоплазмоз, анемия, гамавит, фоспренил, гемотропные микоплазмы, кошки

Keywords: hemoplasmosis, anemia, gamavit, phosprenyl, hemotropic mycoplasmas, cats

Введение

Гемоплазмоз (ранее гемобартонеллез) кошек, или инфекционная анемия ― кровепаразитарное заболевание, широко распространенное среди домашних кошек, особенно среди тех, которых выпускают на улицу[30].  Возбудителем заболевания служат гемоплазмы -  гемотропные микроорганизмы, лишенные клеточной стенки, которые паразитируют на мембранах эритроцитов и могут вызывать гемолитическую анемию[24]. В настоящее время их относят к семейству Mycoplasmatacea, хотя предлагается выделить для них собственный отдельный род, поскольку в отличие от остальных микоплазм, гемоплазмы не поддаются культивированию  invitro[28].Одним из ведущих клинических признаков гемоплазмоза служит анемия, развивающаяся в результате массового гемолиза пораженных эритроцитов [29].

Цель настоящей работы состояла в том, чтобы устранить анемию и ускорить нормализацию кроветворения у кошек с гемоплазмозом. Для этого в комплексную схему терапии животных были дополнительно включены препараты Фоспренил – иммуномодулятор, обладающий противовоспалительной активностью [19], иГамавит, который применяют при кровепаразитарных заболеваниях у различных животных [1,5,6,15,23] как гемостимулятор [8,18] и детоксикант [3,4,20].

Материалы и методы

В настоящее исследование включены клинические данные, собранные в период с 2016 по 2023 год. Большинство животных было из приютов, или бездомные.Всего гемоплазмоз был выявлен у 102 особей (63 кошки и 39 котов) в возрасте от 5-7 месяцев до 8 лет. Из них было 34 пациента с тяжелой формой заболевания, и 68 – с легкой. У кошек с тяжелой формой гемоплазмоза в 45% случаев болезнь осложнялась хронической почечной недостаточностью. Также 5% из них были хроническими носителями токсоплазм.

Диагнозставили по характерным клиническим признакам, по выявлению гемоплазм вмазкахпериферическойкрови,окрашенныхпоРомановскому–Гимзе, а также по результатам ПЦР-диагностикивлаборатории Шанс Bio. Как правило, при легкой степени заболевания в мазках обнаруживали  1-2 гемоплазмыразмером 0,6 мкм на эритроцитах в поле зрения, а при тяжелой -  до 5 и более.

При лечении 45 животных (контрольная группа) использовали стандартную схему терапии, включавшую антибиотик[29], тогда как в схему лечения 57 особей (опытная группа) добавляли еще Гамавити Фоспренил.

Всем пациентам (102 особи) в качестве основного средства этиотропной терапии назначали доксициклин из расчета 4 мг на 1 кг массы тела, 2 раза в день, продолжительность курса от 5 до 7-12 дней, в зависимости от тяжести заболевания. Также применялипреднизолон из расчета 1-2 мг, в зависимости от тяжести заболевания, 1 раз в день, затем - каждые 3 дня, после чего снижали дозу каждые 3 дня. При резком снижении гематокрита (до 15% и ниже) дополнительно назначали препарат железаФеринжект (от 1-3 мл, в зависимости от массы тела, разводили в 30-50 мл физраствора, вводили в/в медленно, 1 раз в 7 дней, при необходимости курс повторяли еще 2-3 раза.

Пациентам опытной группы (57 особей) дополнительно назначали Гамавит (п/к, 1 раз в день, дозировка по инструкции, курс 10 дней) иФоспренил (peros, по 1 мл 2 р в день).

По завершении курса антибиотикотерапии всем пациентам для восстановления микрофлоры кишечника давалиНормоспектрум(1/8 –1/2 капсулы), в зависимости от массы пациента, 1 раз в день, продолжительность курса 1 месяц.

Результаты и обсуждение

К началу лечения у кошек с легкой степенью заболеваниявыявляли снижение аппетита, потерю массы тела, апатию, взъерошенность шерстного покрова, бледность слизистыхоболочек (иногда с желтушностью),умеренную гематурию.Температураколебаласьвпределахнормы.

При тяжелой форме течения гемоплазмоза упациентов наблюдали кахексию, потерю аппетита, апатию, анемичность видимыхслизистыхоболочек,у животных старшего возраста иногда отмечали шумывсердце, гематурию,гепато- и спленомегалию (по результатам УЗИ).

При легкой форме заболевания лечение длилось от 5-7 до 10 дней. При тяжелой форме – от 14 до 21 дня, а полное восстановление пациентов, осложненных хроническими заболеваниями, занимало 1-1,5 месяца.

Таблица 1.Наиболее значимые показатели   общегои биохимического анализа крови  кошек с легкой степенью заболевания (M±m)

Таблица1. The most significant indicators of  the CBC and biochemical blood analysis of cats with mildform of hemoplasmosis  (M±m)

*Нормы,принятые в лаборатории Шанс био

Перед началом лечения у пациентов с легкой степенью заболевания выявлялинебольшую анемию, которая выражалась в незначительнойэритропении (5,3 – 5,5 ×10¹²/л), некотором снижении уровня гемоглобина (75,4– 78,1 г/л) и показателя гематокрита (25,2 – 27,8 %)). Также был умеренно повышен показатель СОЭ (10,7-13,2, мм/ч).

У пациентов с тяжелой формой гемоплазмоза отмечали аналогичные изменения, которые были выражены значительно сильнее. Численность эритроцитов падала до 2,3 – 2,6 ×10¹²/л, уровень гемоглобина снижался до 57,4 – 62,1 г/л, а гематокрит колебался в пределах 12,8 – 14,2%. Также наблюдали тромбоцитопению (132,9 – 135,4х10⁹/л).

По завершении интенсивного лечения у всех пациентов отмечали коррекцию анемии, что выражалось в нормализации численности эритроцитов, уровня гемоглобина и показателя гематокрита. В опытной группе эти изменения были выражены заметно сильнее. В этой же группе наблюдали ускоренную коррекцию тромбоцитопении и нормализацию СОЭ.

При биохимическом исследовании крови у всех пациентовотмечалиповышениеактивности трансаминаз, уровня щелочнойфосфатазы и билирубина в сыворотке крови, что было вызвано гибелью и распадом эритроцитов с последующим нарушением функции печени. При тяжелой форме заболевания эти изменения также носили значительно более выраженный характер.

Таблица 2. Наиболее значимые показатели   общего и биохимического анализа крови  кошек с тяжелой степенью заболевания (M±m)

Table 2. The most significant indicators of  the CBC and biochemical blood analysis of cats with severe form of hemoplasmosis  (M±m)

По завершении лечения кошек с тяжелой формой заболевания показатели интоксикации, характерные для холангиогепатита, у пациентов опытной группы почти достигли границы нормы, тогда как у кошек контрольной группы они еще существенно превышали нормальные значения.

Подход к терапии гемоплазмоза направлен на борьбу с возбудителем ипрекращение разрушения эритроцитов, чем и были обоснованыпредложенные схемы лечения. Поскольку гемоплазмы лишены клеточной стенки, производные пенициллина при данном заболевании не эффективны, а препаратом выбора считают доксициклин[29]- полусинтетический тетрациклин, бактериостатический антибиотик широкого спектра действия. Применение глюкокортикоидов и в частности преднизолона в комплексной терапии гемоплазмоза у кошек способствует снижению эритрофагоцитоза при тяжелом гемолизе, основным механизмом которого является иммуноопосредованноеповреждение инфицированных клеток хозяина [27]. Подключение к схеме фоспренила основывалось на наличии у него противовоспалительной и антиоксидантной активности [19]. Кроме того, предполагалось, что фоспренил как мембранопротектор[11]можетв какой-то степени защищать мембраны от повреждения паразитами, тем самым способствуя снижению как численности гемолизированных эритроцитов, так и выхода свободного гемоглобина в кровь. Это также позволяет снизить степень интоксикации. Наконец, выбор гамавита был основан на его способности купировать экстракорпускулярные анемии и ускорять нормализацию гемопоэза при различных патологиях [5,12,13,18]. Кроме того,  показана эффективность применения Гамавита для ускорения выздоровления кошек от гемоплазмоза [3,21].Также Гамавит является эффективным детоксикантом, устраняющим токсическое действие паразитов и продуктов их распада [16], его успешно используют при отравлениях кошек [7,10] и при хронической болезни почек у кошек [2,5]. Кроме того, совместное применение фоспренила и гамавита оказалось эффективно при ряде заболеваний кошек, сопровождающихся выраженной интоксикацией [9,14].

Для гемоплазмоза характерна регенеративнаягемолитическая анемия, выраженность которойзависит от тяжести и стадии инфекции. Гемоплазмы с помощью тонких филамент прикрепляются к мембране эритроцитов и повреждают ее поверхность, сокращают срок жизни инфицированных клеток и нарушают транспорт кислорода, вызывая гипоксию тканей. Высвобождающиеся в ходе распада поврежденных эритроцитов токсичные продукты жизнедеятельности гемоплазм накапливаются в тканях, способствуя развитию воспаления и повышаястепень интоксикации.При этом наблюдаетсягипербилирубинемия, а также повышение активности АЛТ вследствие гипоксического повреждения печени.Уменьшению воспаления и восстановлению функций печени успешно способствует сочетанное применение Гамавита и Фоспренила. Для купирования дальнейшего развития гемолитической анемии, развивающейся в результате того, что костный мозг уже не в состоянии компенсировать потерю разрушающихся под действием гемоплазм эритроцитов, традиционно рекомендовали такие препараты, как эритропоэтин и цианокобаламин[26],  однако лекарственные средства на основе эритропоэтинов, видоспецифических для кошек, до сих пор не разработаны, а рекомбинантные эритропоэтины, помимо высокой стоимости, обладают довольно значительной реактогенностью [25].В нашей стране ветеринарные специалисты  для коррекции анемии различного генеза и восстановления нарушенной кроветворной функции часто используют Гамавит, который стимулирует костномозговое кроветворение, способствует быстрой репопуляции  эритроцитов, восстанавливает уровень гемоглобина  и оказывает антитоксическое действие.Предполагается, что механизм купирования анемии и стимуляции эритропоэза под действием Гамавита может быть связан с выявленной в эксперименте способности активных компонентов препарата стимулировать пролиферацию стволовых кроветворных клеток и/или ранних эритроидных предшественников [22]. По-видимому, сочетанное применение Гамавита с Фоспренилом может усиливать этот позитивный эффект, поскольку Фоспренил способствует мобилизации стволовых клеток, ускоряя их выброс в кровоток и поступление к внутренним органам [17].

Заключение

Таким образом, включение Гамавита и Фоспренила в классическую схему терапии тяжелой формы гемоплазмоза кошек, основанную на использованииантибиотиков и кортикостероидов, способствует быстрому купированию анемии, восстановлению формулы крови, снятию воспалительной реакции и проявлений интоксикации, а также ускорению клинического выздоровления.

Конфликт интересов

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов.

Библиография

1.Агафонова А.Д., Сосновская О.Ю., Приваленко П.И., Гришин В.В. Профилактика железодефицитной анемии у поросят с помощью гамавита. Свиноводство 2021 №21 С.47-49

2.Анников В.В., Анникова Л.В., Кольдяева М.А., Платицына Е.С. Оценка терапевтической эффективности гамавита в составе комплексной терапии при лечении кошек на второй азотемической стадии хронической почечной недостаточности. Труды Всероссийского  НИИ экспериментальной ветеринарии им.Я.Р.Коваленко2018.Т.80 №2. С. 14-17

3.АнниковВ.В., Анникова Л.В., Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В., Санина А.А.  Коррекция гомеостаза при терапии больных гемоплазмозом кошек. Матер. Межд.научно-практ.конф. «Актуальные проблемы ветеринарной медицины, пищевых и биотехнологий». Саратов, 2018, с.20-23.

4. Леонард Р.А. Влияние гамавита, фоспренила и максидина на ряд биохимических показателей крови собак, больных пироплазмозом. Ветеринарная клиника. 2006. N3. с2–5.
5. Леонард Р.А., Зарипова Т.Е., Балахонов А.Н., Вдовина Н.Ю., Наровлянский А.Н., Пронин А.В., Санин А.В.. Оценка эффективности препарата Гамавит при коррекции ренальной анемии у кошек с ХБП: контролируемое рандомизированное исследование Российский ветеринарный журнал 2020 N 5 с.8-20, DOI: 10.32416/2500-4379-2020-5-8-20

6.Либерман Е.Л., Георгиу Х., Белименко В.В.Опыт применения гамавита при лечении кровепаразитарных болезней северных оленей. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2014. № 4.С. 31-33.

7.Переслегина И.О., Дубровина Т.С., Клинцова Т.Ю., Зотова С.Н., Кожевникова Т.Н.,  Санин А.В. Клинические случаи хронического отравления кошек: опыт применения препарата Гамавит. Ветеринария Кубани 2017 N5 c.23-26

8.Переслегина И.О.,  Санин А.В., Пронин А.В., Наровлянский А.Н.,  Санина А.А. Эффективность Гамавита при лечении гемобартонеллеза  (гемоплазмоза) кошек. Ветеринария 2017 №1 с.15-18

9.Переслегина И.О., Дубровина Т.С., Клинцова Т.Ю., Агафонова А.Д., Зотова С.Н. Гамавит и фоспренил повышают эффективность терапии бытовых отравлений кошек. Ветеринария и кормление 2018 N1 c.34-36

10.Переслегина И.О., Жавнис С.Э.  Коррекцияполиорганной недостаточности у кошки после токсической передозировки наркоза. Ветеринария 2019 N5. с.46-50

11.(ПронинА.В.) ProninA.V., Narovlyansky A.N., SaninA.V.New approaches to the prevention and treatment of viral diseasesArch ImmunolTherExp (Warsz) 2021 Apr 3;69(1):10. DOI10.1007/s00005-021-00613-w

12. Савойская С.Л., Санин А.В., Кожевникова Т.Н. Лечение собак с анемией при хронической болезни почек с помощью гемостимулятора и детоксиканта. Ветеринария 2019 N12 c.50-52

13.Савойская С.Л., Агафонова А.Д.,  Кожевникова Т.Н. Эффективность применения гамавита в составе комплексной терапии дирофиляриоза у собак. Ветеринария и кормление 2020 N5 C.37-39.

14. Савойская С.Л., Огородникова И.В., Кожевникова Т.Н. Контролирование хронической коронавирусной инфекции кошек с помощью фоспренила и гамавита // Ветеринария и кормление. 2021. №3 C.46-48. DOI: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2021-3-13

15.Савойская С.Л. , Санина В.Ю., Кожевникова Т.Н. ,Огородникова И.В. Повышение эффективности терапии бабезиоза собак при применении гамавита. Известия Оренбургского аграрного университета. 2021 №6 (92) С.237-241

16.Саличев А.В., Ожерелков С.В., Изместьева А.В., Виденина А.А., Санин А.В. Рандомизированное контролируемое двойное слепое исследование антитоксического действия гамавита и гамавитфорте в эксперименте invivoс применением Имидокарба дипропионата. Ветеринария Кубани 2011 № 6 с.22-25.

17.Санин, А.В., В.В. Веселовский, Л.Л. Данилов, Т.Н. Кожевникова, О.С. Меримская, О.Ю. Сосновская, В.Ю. Санина, Т.Ю. Тимофеева Усиление мобилизации стволовых кроветворных клеток фосфорилированнымиполиизопреноидами // Росс. иммунол. ж. ― 2008. ― Т. 2 (11). ― № 2-3. ― С. 113.

18.Санин А.В. Гамавит – эффективное средство при экстракорпускулярных анемиях. Ветеринарная клиника 2009.№4 с.16-19

19.Санин А.В., Суханова С.А., Проскурина О.В., Митрохин Н.М., Ганшина И.В., Судьина Г.Ф., Санина В.Ю., Виденина А.А., Кожевникова Т.Н., Санин А.А., Ожерелков С.В., Саличев А.В., Пронин А.В., Наровлянский А.Н.. Исследование противовоспалительной активности фоспренила в эксперименте. Российский ветеринарный журнал, МДЖ. 2011, № 4 – С.17-20.

20.Санин А.В., Кожевникова Т.Н., Сосновская О.Ю., Изместьева А.В., Пронин А.В., Наровлянский А.Н., Ожерелков С.В. Использование принципов доказательной медицины при исследовании антитоксического действия гамавита в эксперименте invivo. Ветеринария. 2015.№6, с.54-56.

21.Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В.Кожевникова Т.Н., Агафонова А.Д.,   Анникова Л.В.,  Анников В.В.,  Гамавит повышает эффективность терапии гемобартонеллеза (гемоплазмоза) у кошек: контролируемое исследование.Российский ветеринарный журнал 2017 №3 с.28-32.

22.Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В., Кожевникова Т.Н., Сосновская О.Ю., Жавнис С.Э., Ожерелков С.В., Климова Д.А. Гамавит для коррекции токсической гемолитической анемии и стимуляции эритропоэза. Ветеринария. 2018. №10 с.54-59

23.Сибен А.Н., Либерман Е.Л., Силиванова Е.А.Влияние иммуномодуляторов и антгельминтиков на состояние крови северных оленей. Вестник ветеринарии. 2015. № 3 (74). С. 64-69.

24.Barker EN. Update on Feline Hemoplasmosis. Vet Clin North Am Small AnimPract. 2019 Jul;49(4):733-743. doi: 10.1016/j.cvsm.2019.02.009.

25.Chalhoub S., Langston C.E., Farrelly J. The Use of Darbepoetin to stimulate erythropoiesis in anemia of kidney disease in cats: 25 Cases. J. Vet. Intern. Med. 2012; 26(2):363-9

26.Chikazawa S.,  Dunning M. A review of anaemia of inflammatory disease in dogs and cats. Journal of Small Animal Practice 2016; 57(7):348-353. DOI: 10.1111/jsap.12498

27. Foley J. E. «Hemotropic Mycoplasma Infections in Animals», 2023. URL: https://www.msdvetmanual.com/circulatory-system/blood-parasites/hemotropic-mycoplasma-infections-in-animals

28.Nibblett BM, Snead EC, Waldner C, Taylor SM, Jackson ML, Knorr LM. Anemia in cats with hemotropic mycoplasma infection: retrospective evaluation of 23 cases (1996-2005). Can Vet J. 2009 Nov;50(11):1181-5.

29.Tasker S, Hofmann-Lehmann R, Belák S, Frymus T, Addie DD, Pennisi MG, Boucraut-Baralon C, Egberink H, Hartmann K, Hosie MJ, Lloret A, Marsilio F, Radford AD, Thiry E, Truyen U, Möstl K. Haemoplasmosis in cats: European guidelines from the ABCD on prevention and management. J Feline Med Surg. 2018 Mar;20(3):256-261. doi: 10.1177/1098612X18758594.

30.Yamakawa AC, Haisi A, Kmetiuk LB, Pellizzaro M, Mendes JCR, Canavessi AMO, Ullmann LS, de Castro WAC, Pessoa AraújoJúnior J, Dos Santos AP, Biondo AW. Molecular detection of feline hemoplasmas and retroviruses in free-roaming and shelter cats within a university campus. JFMS Open Rep. 2023 Feb 13;9(1):20551169221148672. doi: 10.1177/20551169221148672

Bibliography

1.Agafonova A.D.. SosnovskayaO.Yu..PrivalenkoP.I..Grishin V.V. Profilaktikazhelezodefitsitnoyanemii u porosyat s pomoshchyugamavita. Svinovodstvo 2021 № 2 1 S.47-49
2.Annikov V.V..AnnikovaL.V..KoldyayevaM.A..Platitsyna E.S. Otsenkaterapevticheskoyeffektivnostigamavita v sostavekompleksnoyterapiiprilecheniikosheknavtoroyazotemicheskoystadiikhronicheskoypochechnoynedostatochnosti. Trudy Vserossiyskogo NII eksperimentalnoyveterinariiim.Ya.R.Kovalenko 2018.T.80 №2. S. 14-17
3.Annikov V.V..AnnikovaL.V.. Sanin A.V..NarovlyanskiyA.N..ProninA.V..Sanina A.A. Korrektsiyagomeostazapriterapiibolnykhgemoplazmozomkoshek. Mater. Mezhd.nauchno-prakt.konf. «Aktualnyyeproblemyveterinarnoymeditsiny. pishchevykhibiotekhnologiy». Saratov. 2018. s.20-23.
4. Leonard R.A. Vliyaniyegamavita. fosprenilaimaksidinanaryadbiokhimicheskikhpokazateleykrovisobak. bolnykhpiroplazmozom. Veterinarnayaklinika. 2006. N3. s2–5.

5. Leonard R.A..ZaripovaT.E..BalakhonovA.N..VdovinaN.Yu..NarovlyanskiyA.N..ProninA.V.. Sanin A.V..OtsenkaeffektivnostipreparataGamavitprikorrektsiirenalnoyanemii u koshek s KhBP: kontroliruyemoyerandomizirovannoyeissledovaniyeRossiyskiyveterinarnyyzhurnal 2020 N 5 s.8-20. DOI: 10.32416/2500-4379-2020-5-8-20
   6.Liberman E.L..GeorgiuKh..Belimenko V.V. Opytprimeneniyagamavitaprilecheniikroveparazitarnykhbolezneysevernykholeney. Rossiyskiyveterinarnyyzhurnal. Selskokhozyaystvennyyezhivotnyye. 2014. № 4. S. 31-33.
   7.Pereslegina I.O.. DubrovinaT.S..KlintsovaT.Yu..ZotovaS.N..KozhevnikovaT.N.. Sanin A.V. Klinicheskiyesluchaikhronicheskogootravleniyakoshek: opytprimeneniyapreparataGamavit. VeterinariyaKubani 2017 N5 c.23-26
   8.Pereslegina I.O.. Sanin A.V..ProninA.V..NarovlyanskiyA.N..Sanina A.A. EffektivnostGamavitaprilecheniigemobartonelleza (gemoplazmoza) koshek. Veterinariya 2017 №1 s.15-18
   9.Pereslegina I.O..DubrovinaT.S..KlintsovaT.Yu..AgafonovaA.D..Zotova S.N. Gamavitifosprenilpovyshayuteffektivnostterapiibytovykhotravleniykoshek. Veterinariyaikormleniye 2018 N1 c.34-36
   10.Pereslegina I.O..Zhavnis S.E. Korrektsiyapoliorgannoynedostatochnosti u koshkiposletoksicheskoyperedozirovkinarkoza. Veterinariya 2019 N5. s.46-50
   11. (Pronin A.V.) ProninA.V..NarovlyanskyA.N.. Sanin A.V. New approaches to the prevention and treatment of viral diseases Arch ImmunolTherExp (Warsz) 2021 Apr 3;69(1):10. DOI 10.1007/s00005-021-00613-w
   12. SavoyskayaS.L.. Sanin A.V..Kozhevnikova T.N. Lecheniyesobak s anemiyeyprikhronicheskoyboleznipochek s pomoshchyugemostimulyatoraidetoksikanta. Veterinariya 2019 N12 c.50-52
   13.Savoyskaya S.L..AgafonovaA.D..Kozhevnikova T.N. Effektivnostprimeneniyagamavita v sostavekompleksnoyterapiidirofilyarioza u sobak. Veterinariyaikormleniye 2020 N5 C.37-39.
   14. SavoyskayaS.L..OgorodnikovaI.V..Kozhevnikova T.N. Kontrolirovaniyekhronicheskoykoronavirusnoyinfektsiikoshek s pomoshchyufosprenilaigamavita // Veterinariyaikormleniye. 2021. №3 C.46-48. DOI: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2021-3-13
   15.Savoyskaya S.L. .SaninaV.Yu..Kozhevnikova T.N. .Ogorodnikova I.V. Povysheniyeeffektivnostiterapiibabeziozasobakpriprimeneniigamavita. IzvestiyaOrenburgskogoagrarnogouniversiteta. 2021 №6 (92) S.237-241
   16.Salichev A.V..OzherelkovS.V..IzmestyevaA.V..VideninaA.A.. Sanin A.V. Randomizirovannoyekontroliruyemoyedvoynoyeslepoyeissledovaniyeantitoksicheskogodeystviyagamavitaigamavitforte v eksperimente in vivo s primeneniyemImidokarbadipropionata. VeterinariyaKubani 2011 № 6 s.22-25.
   17. Sanin. A.V.. V.V. Veselovskiy. L.L. Danilov. T.N. Kozhevnikova. O.S. Merimskaya. O.Yu. Sosnovskaya. V.Yu. Sanina. T.Yu. TimofeyevaUsileniyemobilizatsiistvolovykhkrovetvornykhkletokfosforilirovannymipoliizoprenoidami // Ross. immunol. zh. ? 2008. ? T. 2 (11). ? № 2-3. ? S. 113.
   18.Sanin A.V. Gamavit – effektivnoyesredstvopriekstrakorpuskulyarnykhanemiyakh. Veterinarnayaklinika 2009.№4 s.16-19
   19. Sanin A.V..SukhanovaS.A..ProskurinaO.V..MitrokhinN.M..GanshinaI.V..SudinaG.F..SaninaV.Yu..VideninaA.A..KozhevnikovaT.N.. Sanin A.A..OzherelkovS.V..SalichevA.V..ProninA.V..NarovlyanskiyA.N..Issledovaniyeprotivovospalitelnoyaktivnostifosprenila v eksperimente. Rossiyskiyveterinarnyyzhurnal. MDZh. 2011. № 4 – S.17-20.
   20. Sanin A.V..KozhevnikovaT.N..SosnovskayaO.Yu..IzmestyevaA.V..ProninA.V..NarovlyanskiyA.N..Ozherelkov S.V. Ispolzovaniyeprintsipovdokazatelnoymeditsinypriissledovaniiantitoksicheskogodeystviyagamavita v eksperimente in vivo. Veterinariya. 2015.№6. s.54-56.
   21.Sanin A.V.. NarovlyanskiyA.N..Pronin A.V. KozhevnikovaT.N..AgafonovaA.D..AnnikovaL.V..AnnikovV.V..Gamavitpovyshayeteffektivnostterapiigemobartonelleza (gemoplazmoza) u koshek: kontroliruyemoyeissledovaniye. Rossiyskiyveterinarnyyzhurnal 2017 №3 s.28-32.
   22.Sanin A.V.. NarovlyanskiyA.N..ProninA.V..KozhevnikovaT.N..SosnovskayaO.Yu..ZhavnisS.E..OzherelkovS.V..Klimova D.A. Gamavitdlyakorrektsiitoksicheskoygemoliticheskoyanemiiistimulyatsiieritropoeza. Veterinariya. 2018. №10 s.54-59
   23.Siben A.N..LibermanE.L..Silivanova E.A. Vliyaniyeimmunomodulyatoroviantgelmintikovnasostoyaniyekrovisevernykholeney. Vestnikveterinarii. 2015. № 3 (74). S. 64-69.24.Barker EN. Update on Feline Hemoplasmosis. Vet Clin North Am Small AnimPract. 2019 Jul;49(4):733-743. doi: 10.1016/j.cvsm.2019.02.009.

25.Chalhoub S., Langston C.E., Farrelly J. The Use of Darbepoetin to stimulate erythropoiesis in anemia of kidney disease in cats: 25 Cases. J. Vet. Intern. Med. 2012; 26(2):363-9

26. Chikazawa S., Dunning M. A review of anaemia of inflammatory disease in dogs and cats. Journal of Small Animal Practice 2016; 57(7):348-353. DOI: 10.1111/jsap.12498
27. Foley J. E. «Hemotropic Mycoplasma Infections in Animals», 2023. URL: https://www.msdvetmanual.com/circulatory-system/blood-parasites/hemotropic-mycoplasma-infections-in-animals
28. Nibblett BM, Snead EC, Waldner C, Taylor SM, Jackson ML, Knorr LM. Anemia in cats with hemotropic mycoplasma infection: retrospective evaluation of 23 cases (1996-2005). Can Vet J. 2009 Nov;50(11):1181-5.

29.Tasker S, Hofmann-Lehmann R, Belák S, Frymus T, Addie DD, Pennisi MG, Boucraut-Baralon C, Egberink H, Hartmann K, Hosie MJ, Lloret A, Marsilio F, Radford AD, Thiry E, Truyen U, Möstl K. Haemoplasmosis in cats: European guidelines from the ABCD on prevention and management. J Feline Med Surg. 2018 Mar;20(3):256-261. doi: 10.1177/1098612X18758594.

30.Yamakawa AC, Haisi A, Kmetiuk LB, Pellizzaro M, Mendes JCR, Canavessi AMO, Ullmann LS, de Castro WAC, Pessoa AraújoJúnior J, Dos Santos AP, Biondo AW. Molecular detection of feline hemoplasmas and retroviruses in free-roaming and shelter cats within a university campus. JFMS Open Rep. 2023 Feb 13;9(1):20551169221148672. doi: 10.1177/20551169221148672

                                       Summary

This study includes clinical data collected from 2016 to 2023. In total, hemoplasmosis was detected in 102 cats (63 females and 39 males) aged from 5-7 months to 8 years. Of these, 34 cats were diagnosed with a severe form of the disease, and 68 with a mild one. In cats with severe hemoplasmosis, in 45% of cases, the disease was complicated by chronic renal failure. Also, 5% of them were chronic carriers of toxoplasmas.Most of the animals were takenfrom shelters, or were homeless.

One of the leading clinical signs of hemoplasmosis is anemia, which develops as a result of mass hemolysis of infected red blood cells.The aim of this work was to eliminate anemia and accelerate the normalization of hematopoiesis in cats with hemoplasmosis.

For the treatment of 45 animals (control group), a standard therapy regimen was used, which included antibiotics and glucocorticoids, whereas for therapy regimen of remaining 57 cats (experimental group)Gamavit and Phosprenyl were added.Using this therapeutic scheme, early relief of anemia, stimulation of erythropoiesis, restoration of blood formula and normalization of liver function were noted as well as acceleration of clinical recovery of sick animals whichoccurred faster by 4-5 days.